Articles
Gestion du stockage des échantillons: Évaluer l'effet du temps et de la méthode de conservation du matériel végétal sur la quantité et la qualité de l'ADN extrait
Résumé
L’URFM stocke plus de 40 000 échantillons végétaux soit à -20 °C soit à température ambiante après déshydratation. Le projet présenté dans cet article avait pour but d’évaluer la quantité et la qualité de l’ADN obtenu à partir d’échantillons de quatre espèces d’arbres méditerranéens faisant l’objet de recherches récurrentes à l’URFM : trois conifères (le pin de Salzman, le sapin pectiné et le cèdre de l’Atlas) et un feuillu (le hêtre commun). L’hypothèse retenue est que la durée de conservation a un effet sur la qualité du matériel génétique ; nous n’avions aucun a priori sur l’effet de la méthode de conservation. Pour mesurer la qualité de l’ADN, nous avons effectué des analyses de génotypage et de séquençage couramment utilisées au laboratoire. Nos résultats montrent une variation entre les quatre espèces étudiées, en fonction du mode et de la durée de conservation, sur la quantité et la qualité de l’ADN. De plus, nous avons montré que les échantillons conservés sur la plus longue période ou avec la méthode la plus basique (à sec) présentent une bonne qualité d’ADN contrairement a des échantillons plus récents.
Références
- Dussert S., Engelmann F., Noirot M., 2003. Development of probabilistic tools to assist in the establishment and management of cryopreserved plant germplasm collections. Cryo-letters : 24, 149-160.
- Esnault F., Pellé R., Dantec J.-P., Bérard A., Le Paslier M.-C., Chauvin J.-E., 2016. Development of a potato cultivar (Solanum tuberosum L.) core collection, a valuable tool to prospect genetic variation for novel traits. Potato Research, 59, 4 : 329-343. DOI 10.1007/s11540-016-9332-x.
- Fabre J. and Dereuddre J., 1990. Encapsulation dehydratation - A new approach to cryopreservation of Solanum shoot-tips. Cryo-Letters 11(6) : 413-426.
- Gallard A., 2008. Étude de la cryoconservation d’apex en vue d’une conservation à long terme de ressources génétiques végétales : Compréhension des phénomenes mis en jeu et évaluation de la qualité du matériel régénéré sur le modèle Pélargonium. Thèse de doctorat. École doctorale d’Angers.
- Huang B., Ruess H., Liang Q., Colleoni C., Spooner D., 2019. Analyses of 202 plastid genomes elucidate the phylogeny of Solanum section Petota. Scientific Reports 9 : 44-54.
- Hawkes J. G.,1990. The potato: Evolution, biodiversity and genetic resources. Belhaven Press, London.
- Marhadour S., Dargier C., Esnault F., Laversin N., Méar A., Perramant M. and Le Hingrat Y., 2014. Construction d’une base de données multi-utilisateurs pour améliorer la gestion des empreintes génétiques des variétés de pomme de terre produites en plants. FranceInnovations Agronomiques 35 : 161-172.
- Mix-Wagner G., 1999. The conservation of potato cultivars. Potato Research 42: 427- 436.
- Murashige T. and Skoog F., 1962. A Revised Medium for Rapid Growth and Bio Assays with Tobacco Tissue Cultures. Plant Physiology 15: 473-497.
- Kim H. H., Yoon J. W., Park YE, Cho EG, Sohn JK, Kim TS, Engelmann F (2006). Cryopreservation of potato cultivated varieties and wild species : Critical factors in droplet vitrification. Cryo-letters 27(4) : 223-234.
- Reed B (2021). Implementing cryogenic storage of clonally propagated plants. Cryo-letters 22: 97-104.
- Sakai A, Kobayashi S, Oiyama L (1990). Cryopreservation of nucellar cells of navel orange by vitrification. Plant cell reports vol 9: 30-33.
- Sakai A, Engelmann F (2007). Vitrification, encapsulation-Vitrification and droplet-vitification : A rewiew. Cryo-letters 28(3): 151-172.
- Spooner D., McLean K., Ramsay G., Waugh R., Bryan G. J., 2005. A single domestication for potato based on multilocus amplified fragment length polymorphism genotyping. Proceedings of the National Academy of Sciences 102: N°41.
- Spooner D., 2009. DNA barcoding will frequently fail in complicated groups : An example in wild potatoes. American journal of botany 96(6) : 1177-1180.
- Tendille C. and Lecerf M., 1974. La multiplication végétative de l’asperge (ASPARAGUS OFFICINALIS L). Action de divers facteurs en particulier la nutrition minérale, sur le développement des méristèmes d’asperge, sur la croissance des plantules issues de ces méristèmes et sur la production de plante adultes. Annales Amélioration des plantes 24 (3) : 269-282.
Pièces jointes
Pas de document complémentaire pour cet articleStatistiques de l'article
Vues: 8
Téléchargements
PDF: 2